注意:正式测定务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定。 规格:100T/48S 产品内容: 提取液:液体 60mL×1 瓶, 4℃保存; 试剂一:液体 7 mL×1 瓶, 4℃保存; 试剂二:粉剂×1 支,-20℃保存,用时加入 1.3 mL 双蒸水充分溶解备用,配好后可分装成小管-20 ℃保存,可保存两周,禁止反复冻融; 试剂三:液体 7 mL×1 瓶,4℃保存; 试剂四:液体 25 mL×1 瓶,4℃保存; 丙酮酸钠标准液:液体 1 mL×1 支,4℃保存,2µmol/ml。 产品简介: LDH(EC 1.1.1.27)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是糖酵解途径的末端酶,催化丙酮酸与乳酸之间的可逆反应,伴随着 NAD+/NADH 之间互变。 LDH 催化NAD+氧化乳酸生成丙酮酸,丙酮酸进一步与 2, 4 - 二硝基苯肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙,在碱性溶液中显棕红色,颜色深浅与丙酮酸浓度成正比。 试验中所需的仪器和试剂: 可见分光光度计/酶标仪、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。 操作步骤: 一、粗酶液提取: 1. 细菌、细胞或组织样品的制备: 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为500~1000:1 的比例(建议500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液), 超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30 次);8000g 4℃ 离心10min,取上清,置冰上待测。 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织, 加入1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2. 血清(浆)样品:直接检测。 3. 丙酮酸钠标准液:取 100µL 标准液,倍比稀释至 1、0.5、0.25、0.125、0µmol/mL,用2、1、0.5、0.25、0.125、0µmol/mL 做标准曲线。 二、测定操作表: 1. 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 450nm,蒸馏水调零。 2. 样本测定 试剂名称(µL) | 测定管 | 对照管 | 标准管 | 待测样本 | 10 | 10 | - | 标准液 | - | - | 10 | 试剂一 | 50 | 50 | 50 | 试剂二 | 10 | - | - | 蒸馏水 | - | 10 | 10 |
充分混匀,37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)准确水浴 15min
充分混匀,室温静置 3min,取200µL 转移至微量玻璃比色皿或在 96 孔板中,450 nm 下测定吸光度,计算∆A=A 测定管-A 对照管。每个测定管需要设一个对照。根据标准管测定值和浓度做标准曲线,y 为标准品浓度,µmol/mL;x 为对吸光度(减去浓度为0 的标准管的OD 值)。 LDH 活力单位计算: 1. 计算样品丙酮酸的含量,即将∆A 带入回归方程中(x),计算y 值 2. 血清(浆)LDH 活力的计算 单位的定义:每 mL 血清(浆)每分钟催化产生 1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。 LDH(U/mL)=y×V 样÷V 样÷T×103=66.7×y 3. 细胞、细菌和组织中LDH 活力的计算 (1) 按样本蛋白浓度计算: 单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1 nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。 LDH(U/mg prot)= y×V 样÷(Cpr×V 样)÷T×103=66.7×y÷Cpr 需要另外测定,建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒。 (2) 按样本鲜重计算: 单位的定义:每 g 组织每分钟催化产生 1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。 LDH(U/g 鲜重)= y×V 样÷(W÷V 样总×V 样)÷T×103=66.67×y÷W (3) 按细菌或细胞密度计算: 单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1nmol 丙酮酸定义为一个酶活力单位。 LDH(U/104 cell)= y×V 样÷(500÷V 样总×V 样)÷T×103=0.133×y V 样:反应体系中加入的样本体积,10µL=0.01mL;V 样总:加入的提取液体积,1mL;T: 反应时间,15 min;Cpr:蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量,g;500:细胞或细菌总数, 500 万;103:1µmol/mL=103nmol/mL。 原创作者:青岛捷世康生物科技有限公司 |